花椰菜嵌纹病毒
花椰菜嵌纹病毒 | |
---|---|
电子显微镜下的花椰菜嵌纹病毒 | |
病毒分类 | |
(未分级): | 病毒 Virus |
域: | 核糖病毒域 Riboviria |
界: | 副核糖病毒界 Pararnavirae |
门: | 逆转录酶病毒门 Artverviricota |
纲: | 逆转录酶病毒纲 Revtraviricetes |
目: | 逆转录病毒目 Ortervirales |
科: | 花椰菜病毒科 Caulimoviridae |
属: | 花椰菜病毒属 Caulimovirus |
种: | 花椰菜嵌纹病毒 Cauliflower mosaic virus
|
花椰菜嵌纹病毒(Cauliflower mosaic virus,简称CaMV)是花椰菜病毒科花椰菜病毒属的一种病毒,属DNA逆转录病毒[1],此病毒可感染十字花科的植物,有些毒株(D4与W260)还可感染茄科曼陀罗属或烟草属的物种,以桃蚜等近30种蚜虫传播[2][3],因此避免蚜虫与幼苗接触为防治此病毒感染的有效措施[3]。
花椰菜嵌纹病毒感染的植株症状包括植株叶片出现嵌纹、叶片组织坏死、植株矮化变形等,因病毒株、植株生态型与环境因子而异[4]。此病毒为温带地区普遍的植物病毒,对十字花科作物造成相当的经济损失,有报导指有10%市售的白菜与花椰菜均被此病毒感染[3]。
病毒学
[编辑]花椰菜嵌纹病毒的颗粒为正二十面体,直径约52奈米[5][6];基因组为环状双股DNA,长约8kb,可转录产生35S与19S两种mRNA,前者包含6至8个开放阅读框[7][8][9],后者则只有1个开放阅读框(ORF VI),编码TAV蛋白。35S RNA转译起始时会发生核糖体分流,即核糖体跳过前方二级结构,直接跳至开放阅读框的起始密码子开始转译[10];另外TAV蛋白可与转译中的核糖体和eIF3结合,核糖体转译完35S RNA上的一个开放阅读框后,再度开始转译下一个开放阅读框[11]。
许多易感植物可以miRNA和siRNA等小RNA与AGO等蛋白结合,抑制此病毒的感染,病毒基因组前端的非编码区的RNA则可被Dicer切割产生大量小RNA,可与植物体抗病毒的miRNA和siRNA竞争结合AGO蛋白,而前端非编码区衍生的小RNA虽也可引导AGO蛋白至病毒35S RNA的对应区域,却因该区二级结构复杂而难以结合,进而达成抑制宿主抗病毒反应的效果[12]。
应用
[编辑]许多转基因作物皆是使用花椰菜嵌纹病毒35S RNA的启动子来表现外加的基因,有人担忧其与人类DNA重组后可能影响人体基因表现,又因此启动子序列与ORF VI重叠,也有人质疑其可能在作物中表现病毒蛋白[13],但实验结果显示病毒启动子与人类DNA重组在正常条件下发生的机率极低,且此启动子无法在哺乳动物细胞中表现蛋白[3]。
参考文献
[编辑]- ^ Pringle, CR. Virus taxonomy--1999. The universal system of virus taxonomy, updated to include the new proposals ratified by the International Committee on Taxonomy of Viruses during 1998. Arch Virol. 1999, 144 (2): 421–9. PMC 7086988 . PMID 10470265. doi:10.1007/s007050050515.
- ^ Brault, V.; Uzest, M.; Monsion, B.; Jacquot, E.; Blanc, S. Aphids as transport devices for plant viruses. Comptes Rendus Biologies. 2010, 333 (6–7): 524–38. PMID 20541164. doi:10.1016/j.crvi.2010.04.001.
- ^ 3.0 3.1 3.2 3.3 Aurélie Bak, Joanne B. Emerson. Cauliflower mosaic virus (CaMV) Biology, Management, and Relevance to GM Plant Detection for Sustainable Organic Agriculture. Front. Sustain. Food Syst. 2020 [2021-12-06]. doi:10.3389/fsufs.2020.00021. (原始内容存档于2022-06-15).
- ^ Khelifa, M.; Massé, D.; Blanc, S.; Drucker, M. Evaluation of the minimal replication time of Cauliflower mosaic virus in different hosts. Virology. 2010, 396 (2): 238–45. PMID 19913268. doi:10.1016/j.virol.2009.09.032 .
- ^ Cheng, RH.; Olson, NH.; Baker, TS. Cauliflower mosaic virus: a 420 subunit (T = 7), multilayer structure. Virology. Feb 1992, 186 (2): 655–68. PMC 4167691 . PMID 1733107. doi:10.1016/0042-6822(92)90032-k.
- ^ Haas, M.; Bureau, M.; Geldreich, A.; Yot, P.; Keller, M. Cauliflower mosaic virus: still in the news. Mol Plant Pathol. Nov 2002, 3 (6): 419–29. PMID 20569349. doi:10.1046/j.1364-3703.2002.00136.x.
- ^ Fütterer, J.; Gordon, K.; Bonneville, JM.; Sanfaçon, H.; Pisan, B.; Penswick, J.; Hohn, T. The leading sequence of caulimovirus large RNA can be folded into a large stem-loop structure. Nucleic Acids Res. Sep 1988, 16 (17): 8377–90. PMC 338565 . PMID 3419922. doi:10.1093/nar/16.17.8377.
- ^ Pooggin, MM.; Hohn, T.; Fütterer, J. Forced evolution reveals the importance of short open reading frame A and secondary structure in the cauliflower mosaic virus 35S RNA leader. J Virol. May 1998, 72 (5): 4157–69. PMC 109645 . PMID 9557705. doi:10.1128/JVI.72.5.4157-4169.1998.
- ^ Hemmings-Mieszczak, M.; Steger, G.; Hohn, T. Alternative structures of the cauliflower mosaic virus 35 S RNA leader: implications for viral expression and replication. J Mol Biol. Apr 1997, 267 (5): 1075–88. PMID 9150397. doi:10.1006/jmbi.1997.0929.
- ^ Pooggin MM, Futterer J, Skryabin KG, Hohn T. Ribosome shunt is essential for infectivity of cauliflower mosaic virus.. Proc Natl Acad Sci U S A. 2001, 98 (3): 886–91. PMC 14679 . PMID 11158565. doi:10.1073/pnas.98.3.886.
- ^ Park, HS.; Himmelbach, A.; Browning, KS.; Hohn, T.; Ryabova, LA. A plant viral reinitiation factor interacts with the host translational machinery. Cell. 2001, 106 (6): 723–33. PMID 11572778. S2CID 14384952. doi:10.1016/S0092-8674(01)00487-1 .
- ^ Blevins T, Rajeswaran R, Aregger M, Borah BK, Schepetilnikov M, Baerlocher L; et al. Massive production of small RNAs from a non-coding region of Cauliflower mosaic virus in plant defense and viral counter-defense.. Nucleic Acids Res. 2011, 39 (12): 5003–14. PMC 3130284 . PMID 21378120. doi:10.1093/nar/gkr119.
- ^ Podevin, N.; du Jardin, P. Possible consequences of the overlap between the CaMV 35S promoter regions in plant transformation vectors used and the viral gene VI in transgenic plants. GM Crops Food. 2012, 3 (4): 296–300. PMID 22892689. doi:10.4161/gmcr.21406 .